PADRONIZAÇÃO DE METODOLOGIA CRISPR/DCAS9 PARA IDENTIFICAÇÃO DE INTEGRAÇÃO DE MINICÍRCULOS DE KDNA DE TRYPANOSOMA CRUZI NO GENOMA DE CÉLULAS HOSPEDEIRAS

Tatiana Shiroma Borges Ferreira, Izabela Marques Dourado Bastos Charneau, Mariana Hecht
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Abstract

Introdução: A doença de Chagas (DC) é uma doença infecciosa causada pelo protozoário Trypanosoma cruzi. Estima-se que 6 a 7 milhões de pessoas estejam infectadas no mundo todo. Destes, aproximadamente 30% evoluem para a fase crônica sintomática, caracterizada pelo desenvolvimento de manifestações cardíacas, digestivas ou mistas. A integração de minicírculos de kDNA de T. cruzi no genoma hospedeiro é um dos fatores que pode influenciar na evolução da patogênese da DC. Diversos experimentos demonstraram a transferência de kDNA do parasito para os genomas de diferentes vertebrados. Na maioria dos casos, os minicírculos de kDNA estavam associados a retrotransposons do tipo LINE-1, permitindo a mobilização do kDNA para diferentes locais do genoma. Tais inserções poderiam resultar no surgimento de novas proteínas, na alteração da expressão ou, até mesmo, no silenciamento de genes. O sistema CRISPR/dCas9 representa uma plataforma promissora para complementar os estudos acerca da transferência gênica lateral. Esse sistema adaptado possibilita a geração de imagens de sequências específicas de DNA endógeno de células vivas, permitindo a visualização da organização e dinâmica de integração de kDNA nas células. Objetivos: Quantificar a população de células que contém as integrações no genoma ao longo de diferentes períodos de tempo e determinar se a presença do parasito é necessária para a propagação das integrações. Metodologia: Células HEK-293 serão infectadas com a cepa Y de T. cruzi e divididas em dois grupos, onde um deles receberá tratamento com Benznidazol. Os grupos serão transfectados com o sistema CRISPR/dCas9 utilizando RNAs guias voltados para sequências de minicírculos de kDNA, para regiões de LINE-1 e para uma sequência não direcionada ao genoma humano, que servirá como controle negativo. As transfecções serão analisadas por microscópio de fluorescência. Resultados: Até o momento, os resultados da transfecção com sgRNA de LINE-1 mostraram o bom funcionamento do sistema CRISPR/dCas9, bem como sua capacidade em reconhecer sequências repetitivas no genoma. Conclusão: Os resultados preliminares mostram que é possível rastrear o número de cópias de determinada sequência dentro da célula. Assim, a integração de kDNA de T. cruzi poderia ser monitorada durante toda a infecção, permitindo analisar a interação parasito-hospedeiro a nível celular.
CRISPR/DCAS9方法的标准化鉴定克氏锥虫KDNA小圆整合到宿主细胞基因组
简介:恰加斯病(cd)是一种由原生动物克氏锥虫引起的传染病。据估计,全世界有600万至700万人受到感染。其中约30%发展为有症状的慢性阶段,其特征是发展为心脏、消化或混合表现。克氏锥虫kDNA小圆在宿主基因组中的整合是影响DC发病机制进化的因素之一。一些实验表明,kDNA从寄生虫转移到不同脊椎动物的基因组。在大多数情况下,kDNA小圆与LINE-1型反转录转座子有关,允许kDNA动员到基因组的不同位置。这种插入可能导致新蛋白质的出现,改变表达,甚至基因沉默。CRISPR/dCas9系统是补充横向基因转移研究的一个很有前途的平台。这种适应的系统能够生成活细胞内源性DNA的特定序列的图像,允许可视化细胞中kDNA的组织和动态整合。目的:量化基因组中包含整合的细胞在不同时期的数量,并确定整合的传播是否需要寄生虫的存在。方法:将克氏T. Y株感染HEK-293细胞分为两组,其中一组用苯硝唑治疗。这些组将用CRISPR/dCas9系统转染,使用引导rna针对kDNA小圆序列、行-1区域和非人类基因组序列,作为阴性对照。转染将在荧光显微镜下进行分析。结果:迄今为止,sgRNA转染1号线的结果显示CRISPR/dCas9系统功能良好,具有识别基因组重复序列的能力。结论:初步结果表明,在细胞内追踪特定序列的拷贝数是可能的。因此,可以在整个感染过程中监测克氏锥虫kDNA的整合,从而在细胞水平上分析寄生虫-宿主的相互作用。
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